中国药典常用几种灭菌方法
2010-08-23
中国药典常用几种灭菌方法
一、湿热灭菌法
本法系指将物品置于压力蒸汽灭菌器内利用高压饱和蒸汽、过热水喷淋等手段使微
生物菌体中的蛋白质、核酸发生变性而杀灭微生物的方法。该法灭菌能力强，
为热力灭菌中最有效、应用最广泛的灭菌方法。药品、容器、培养基、无菌
衣、胶塞以及其他遇高温和潮湿不发生变化或损坏的物品，均可采用本法灭
菌。流通蒸汽不能完全杀灭细菌孢子，一般可作为不耐热无菌产品的辅助灭
菌手段。
湿热灭菌条件通常采用121℃*15min、121℃*30min、或116℃*40min的程序，也可
采用其他温度和时间参数，但必须保证物品灭菌后的SAL《10-6。对热稳定的物
品，可采用过度杀灭法，其SAL应《10-12。热稳定性较差产品的标准灭菌时间
F0［指灭菌温度为121℃，生物指示菌的耐热参数D值为1分，灭菌温度系数Z值
为10.0℃时的标准灭菌时间（121℃下计算的微生物等效灭活率）］一般不低于
8min。如产品的热稳定性很差时，可允许湿热灭菌的F0低于8，此情况下，应在
生产全过程中，对产品中污染的微生物严加监控，并采取各种措施降低微生物
污染水平，确保被灭菌产品达到无菌保证要求。
采用湿热灭菌时，被灭菌物品有适当的装载方式，不能排列过密，以保证灭
菌的有效性和均一性。
湿热灭菌法应确认灭菌柜在不同装载时可能存在的冷点。当用生物指示剂进
一步确认灭菌效果时，应将其置于冷点处。本法生物指示剂为嗜热脂肪芽孢杆
菌孢子（spores of Bacillus stearothermophilus）。
二、干热灭菌法
本法系指将物品置于干热灭菌柜、隧道灭菌器等设备中，利用干热空气
达到杀灭微生物或消除热原物质的方法。适用于耐高温但不宜用湿热灭菌法
灭菌的物品灭菌，如玻璃器具、金属材质容器、纤维制品、固体试药、液状
石蜡等均可采用本法灭菌。
干热灭菌条件一般为160~170℃*120min以上、170~180℃*60min以上或250℃*45min
以上，也可采用其他温度和时间参数。应保证物品灭菌后的SAL《10-6。干热
过度杀灭后物品的SAL应《10-12，此时物品一般无需进行灭菌前污染微生物的
测定。250℃*45min的干热灭菌也可除去无菌产品包装容器及有关生产灌装用具
中的热原物质。
采用干热灭菌时，被灭菌物品应有适当的装载方式，不能排列过密，以保证
灭菌的有效性和均一性。
干热灭菌法应确认灭菌柜中的温度分布符合设定的标准及确定最冷点位置等。
常用的生物指示剂为枯草芽孢杆菌孢子（Spores of Bacillus subtilis ）。细菌内毒素
灭活验证试验是证明除热原过程有效性的试验。一般将小于1000单位的细菌内
毒素加入待去热原的物品中，证明该去热原工艺能使内毒素至少下降3个对数
单位。细菌内毒素灭活验证试验所用的细菌内毒素一般为大肠埃希菌内毒素
(Escherichia coli endoxin )。
三、辐射灭菌法
本法系指灭菌物品置于适宜放射源辐射的γ射线或适宜的电子加速器发生
的电子束中进行电离辐射而达到杀灭微生物的方法。本法最常用的60Co-γ射线
辐射灭菌。医疗器械、容器、生产辅助用品、不受辐射破坏的原料药及成品
等均可用本法灭菌。
采用辐射灭菌法灭菌后的产品其SAL应《10-6。γ射线辐射灭菌所控制的参数
主要是辐射剂量（指灭菌物品的吸收剂量）。该剂量的制定应考虑灭菌物品的
适应性及可能污染的微生物最大数量及最强抗辐射力，事先应验证所使用的剂
量不影响被灭菌物品的安全性、有效性及稳定性。常用的辐射灭菌吸收剂量为
25KGy。对最终产品、原料药、某些医疗器材应尽可能采用低辐射 剂量灭菌。灭
菌前，应对被灭菌物品微生物污染的数量和抗辐射强度进行测定，以评价灭菌
过程赋予该灭菌物品的无菌保证水平。
灭菌时，应采用适当的化学或物理方法对灭菌物品吸收的辐射剂量进行监控，
以充分证实灭菌物品吸收的剂量是在规定的限度内。如采用 与灭菌物品一起被
辐射的放射性剂量计，剂量计要置于规定的部位。在初安装时剂量计应用标准
源进行校正，并定期进行再校正。
60Co-γ射线辐射灭菌法常用的生物指示剂为短小芽孢杆菌孢子(Spores of Bacillus
pumilus)。
四、气体灭菌法
本法系指用化学消毒剂形成的气体杀灭微生物的方法。常用的化学消毒剂有
环氧乙烷、气态过氧化氢、甲醛、臭氧（O3）等，本法适用 于在气体中稳定的
物品灭菌。采用气体灭菌法时，应注意灭菌气体的可燃可爆性、致畸性和残留
毒性。
本法中最常用的气体是环氧乙烷，一般与80%~90%的惰性气体混合使用，在
充有灭菌气体的高压腔室内进行。该法可用于医疗器械，塑料制品等不能采用
高温灭菌的物品灭菌。含氯的物品及能吸附环氧乙烷的物品则不宜使用本法灭
菌。
采用环氧乙烷灭菌时，灭菌柜内的温度、湿度、灭菌气体浓度、灭菌时间是
影响灭菌效果的重要因数。可采用下列灭菌条件：
温度 （54±10）℃
相对湿度（60±10）%
灭菌压力 8*10〈5〉Pa
灭菌时间 90min
灭菌条件应予验证 灭菌时，将灭菌腔室先抽成真空，然后通入蒸汽使腔室
内达到设定的温湿度平衡的额定值，再通入经过滤和预热的环氧乙烷气体。灭
菌过程中，应严密监控腔室的温度、湿度、压力、环氧乙烷浓度及灭菌时间。
必要时使用生物指示剂监控灭菌效果。本法灭菌程序的控制具有一定难度，整
个灭菌过程应在技术熟练人员的监督下进行。灭菌后，应采取新鲜空气置换，
使残留环氧乙烷和其他易挥发性残留物消散。并对灭菌物品中的环氧乙烷残留
物和反应产物进行监控，以证明其不超过规定的限度，避免产生毒性。
采用环氧乙烷灭菌时，应进行泄露试验，以确认灭菌腔室的密闭性。灭菌程
序确认时，还应考虑物品包装材料和灭菌腔室中物品的排列方式对灭菌气体的
扩散和渗透的影响。生物指示剂一般采用枯草芽孢杆菌孢子（spores of Bacillus
subtilis)。
五、过滤除菌法
本法系利用细菌不能通过致密具空滤材的原理以除去气体或液体中微生物的
方法。常用于热不稳定的药品溶液或原料的除菌。
除菌过滤器采用孔径分布均匀的微孔滤膜作过滤材料，微孔滤膜分亲水性和
疏水性两种。滤膜材质依过滤物品的性质及过滤目的而定。药品生产中采用的
除菌滤膜孔径一般不超过0.22um。过滤器不得对被滤过成分有吸附作用，也不能
释放物质，不得有纤维脱落，禁用含石棉的过滤器。滤器和滤膜在使用前应进
行洁净处理，并用高压蒸汽进行灭菌或作在线灭菌。更换品种和批次应先清洗
滤器，再更换滤膜。
过滤过程中无菌保证与过滤液体的初始生物负荷及过滤器的对数下降值LRV（
log reduction value )有关。LRV系指规定条件下，被过滤液体过滤前的微生物数量
与过滤后的微生物数量比的常用对数值。即：
LRV =lgN0-lgN
式中 N0为产品除菌前的微生物数量；
N为产品除菌后的微生物数量。
LRV用于表示过滤器的过滤除菌效率，对孔径为0.22um的过滤器而言，要求每
1cm2有效过滤器面积的LRV应不小于7。因此过滤除菌时，被过滤产品总的污染
量应控制在规定的限度内。为保证过滤除菌效果，可使用两个过滤器串连过滤，
或在灌装前用过滤器进行再次过滤。
在过滤除菌中，一般无法对全过程中过滤器的关键参数（滤膜孔径的大小及
分布，滤膜的完整性及LRV）进行监控。因此，在每一次过滤除菌前后均应作
滤器的完整性试验，即气泡点试验或压力维持试验或气体扩散流量试验，确认
滤膜在除菌过滤过程中的有效性和完整性。除菌过滤器的使用时间应进行验证，
一般不应超过一个工作日，否则应进行验证。
过滤除菌法常用的生物指示剂为缺陷假单胞菌（Pseudomonas diminuta)。
通过过滤除菌法达到无菌产品应严密监控其生产环境的洁净度，建议在无菌
环境下进行过滤操作。相关的设备、包装容器、塞子及其他物品应采用适当的
方法进行灭菌，并防止再污染。